細(xì)胞凍存是細(xì)胞保存的主要方法之一。利用凍存技術(shù)將細(xì)胞置于-196℃液氮中低溫保存，可以使細(xì)胞暫時(shí)脫離生長(zhǎng)狀態(tài)而將其細(xì)胞特性保存起來(lái)，這樣在需要的時(shí)候再?gòu)?fù)蘇細(xì)胞用于實(shí)驗(yàn)。既可以防止因正在培養(yǎng)的細(xì)胞被污染或其他意外事件而使細(xì)胞丟種，又起到了細(xì)胞保種的作用。那么你知道細(xì)胞凍存的操作步驟是什么嗎？讓我們一起來(lái)看看吧！
 

　　實(shí)驗(yàn)開始前，要先做好準(zhǔn)備工作：
 

　　將凍存管、離心管、移液管、移液器等耗材準(zhǔn)備齊全，放入超凈臺(tái)中，打開紫外線照射 30 分鐘。打開通風(fēng)機(jī)通風(fēng) 3 分鐘。用 75%酒精擦拭操作臺(tái)和雙手。準(zhǔn)備好冰盒。將離心機(jī)調(diào)節(jié)至所需轉(zhuǎn)速，細(xì)胞完全培養(yǎng)基、DMSO、胰酶等放于37℃水浴箱中預(yù)熱。
 

　　凍存步驟：
 

　　1. 取出細(xì)胞，酒精消毒，放入超凈臺(tái)。
 

　　Tip1：應(yīng)在細(xì)胞生長(zhǎng)良好、致密度約為 80-90%，活力達(dá) 90%以上的狀態(tài)下凍存。細(xì)胞活力差的細(xì)胞在凍存后的成活率很小，因此，一定要在細(xì)胞旺盛分裂時(shí)期凍存。
 

　　2. 配置細(xì)胞凍存液：按無(wú)血清培養(yǎng)基：血清：DMSO=7:2:1 的比例配置細(xì)胞凍存液。【或者血清：DMSO=9：1，亦可以根據(jù)細(xì)胞特性，選擇供應(yīng)商推薦的凍存液配方】。
 

　　Tip2：DMSO 應(yīng)為試劑級(jí)等級(jí)，無(wú)菌且無(wú)色，可以用0.22微米濾膜過(guò)濾，或者直接購(gòu)買無(wú)菌產(chǎn)品。以5-10 ml小體積分裝，4℃避光保存，勿作多次解凍。
 

　　Tip3：因DMSO本身就有滅菌的作用，因此使用前不需要進(jìn)行高壓滅菌。高壓滅菌反而會(huì)破壞它的分子結(jié)構(gòu)，以至于降低冷凍保存效果。
 

　　Tip4：在常溫下，DMSO對(duì)人體有害，應(yīng)注意生物安全防護(hù)。
 

　　Tip5：凍存液應(yīng)該提前配制，防止臨時(shí)配制產(chǎn)生的熱量損傷細(xì)胞。
 

　　Tip6：加大凍存液中血清的比例對(duì)于保存某些脆弱的干細(xì)胞以及一些比較珍貴的細(xì)胞很有好處的。
 

　　3. 按照細(xì)胞傳代步驟，對(duì)細(xì)胞進(jìn)行消化、解離。
 

　　4. 消化好的細(xì)胞離心后，棄掉上清液，用凍存液重懸。
 

　　Tip7：用移液器吸去上清液時(shí)，不要吸到底部的細(xì)胞沉淀。
 

　　Tip8：用移液器輕柔吹打細(xì)胞，避免損傷細(xì)胞。
 

　　Tip9：混勻 DMSO 要快，因?yàn)?DMSO 對(duì)細(xì)胞有毒性，混合后應(yīng)盡快凍存。
 

　　5. 可用細(xì)胞計(jì)數(shù)板或計(jì)數(shù)儀器對(duì)細(xì)胞進(jìn)行計(jì)數(shù)，將細(xì)胞總數(shù)調(diào)節(jié)至細(xì)胞數(shù)量為5×105/ml為宜。
 

　　6. 將細(xì)胞凍存懸液分裝入細(xì)胞凍存管中，一般2ml凍存管裝入 1 -1.5 ml細(xì)胞凍存懸液為宜。
 

　　7. 放入專業(yè)的細(xì)胞凍存盒中，或者按照：
 

　　﹣4 ℃ 30分鐘→20℃ 30分鐘→﹣80℃過(guò)夜→液氮保存的順序進(jìn)行凍存。
 

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